Везде

ОФНФизика плазмы Plasma Physics Reports

  • ISSN (Print) 0367-2921
  • ISSN (Online) 3034-6371

ОБЛУЧЕНИЕ МЕЗЕНХИМАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК АРГОНОВОЙ ПЛАЗМЕННОЙ СТРУЕЙ С РАЗЛИЧНОЙ ПРИМЕСЬЮ КИСЛОРОДА

Вы можете
Код статьи
S30346371S0367292125020035-1
DOI
10.7868/S3034637125020035
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Захарченко А. Е.
  • Аффилиация: НИЦ эпидемиологии и микробиологии им Н.Ф. Гамалеи
Домнин П. А.
  • Аффилиация: НИЦ эпидемиологии и микробиологии им Н.Ф. Гамалеи
Калинин Е. В.
  • Аффилиация: НИЦ эпидемиологии и микробиологии им Н.Ф. Гамалеи
Грошева А. Г.
  • Аффилиация: НИЦ эпидемиологии и микробиологии им Н.Ф. Гамалеи
Петряков А. В.
  • Аффилиация: ГНЦ РФ “Троицкий институт инновационных и термоядерных исследований”
Медведев М. А.
  • Аффилиация:
    НИЦ эпидемиологии и микробиологии им Н.Ф. Гамалеи
    ГНЦ РФ “Троицкий институт инновационных и термоядерных исследований”
Фефелова Е. А.
  • Аффилиация: НИЦ эпидемиологии и микробиологии им Н.Ф. Гамалеи
Hajisharifi K.
  • Аффилиация: Kharazmi University
Heydari E.
  • Аффилиация: Kharazmi University
Mehdian H.
  • Аффилиация: Kharazmi University
Robert E.
  • Аффилиация: Kharazmi University
Stancampiano A.
  • Аффилиация: Universite´ d’Orle´ans
Ермолаева С. А.
  • Аффилиация: НИЦ эпидемиологии и микробиологии им Н.Ф. Гамалеи
Акишев Ю. С.
  • Аффилиация:
    НИЦ эпидемиологии и микробиологии им Н.Ф. Гамалеи
    ГНЦ РФ “Троицкий институт инновационных и термоядерных исследований”
    Национальный исследовательский ядерный университет “Московский инженерно-физический институт” МИФИ
Том/ Выпуск
Том 51 / Номер выпуска 2
Страницы
148-162
Аннотация
Представлены результаты экспериментов по использованию струи низкотемпературной плазмы (НТП) для активации питательной жидкой среды αMEM, в которой находились мезенхимальные стволовые клетки (МСК), выделенные из костного мозга крыс Wistar. Струя НТП создавалась аксиально-симметричным барьерным разрядом с тонким стержневым электродом, расположенным внутри кварцевой трубки вдоль ее оси. Трубка продувалась аргоном со скоростью потока на выходе трубки около 25 м/с. Исследовались условия, в которых НТП активация αMEM среды может ускорять пролиферацию МСК. Оказалось, что конечный эффект воздействия активированной жидкой среды на клетки сильно зависит от чистоты аргона, используемого для формирования плазменной струи. Наличие малой примеси кислорода в аргоне на уровне 700 ppm приводит к формированию в разряде и в плазменной струе активных форм кислорода, а также озона с достаточно высокой концентрацией. Озон, поставляемый струей в жидкую среду, хорошо в ней растворяется, и, как сильный окислитель, может губительно воздействовать на стволовые клетки. Приводятся результаты по различию состава активных частиц в плазменных струях в чистом аргоне и в аргоне с малой примесью кислорода, а также результаты микробиологических исследований по воздействию двух типов плазменных струй на мезенхимальные стволовые клетки.
Ключевые слова
низкотемпературная плазма барьерный разряд плазменная струя плазменная медицина стволовые клетки
Дата публикации
28.01.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
23

Библиография

  1. 1. Герасименко М.Ю., Зайцева Т.Н., Евстигнеева И.С. // Физическая и реабилитационная медицина, медицинская реабилитация. 2019. Т. 1. С. 79. https://doi.org/10.36425/2658-6843-2019-3-79-89
  2. 2. Laroussi M. // Frontiers Phys. 2020. V. 8. P. 74. https://doi.org/10.3389/fphy.2020.00074
  3. 3. Thomas J.E., Stapelmann K. // Plasma. 2024. V. 7. P. 386. https://doi.org/10.3390/plasma7020022
  4. 4. von Woedtke Th., Bekeschus S., Weltmann K.-D., Wende K. // Plasma Processes Polymers. 2025. V. 22. P. e2400255. https://doi.org/10.1002/ppap.202400255
  5. 5. Kong M.G., Kroesen G., Morfill G., Nosenko T., Shimizu T., Van Dijk J., Zimmermann J.L. // New J. Phys. 2009. V. 11. P. 115012. https://doi.org/10.1088/1367-2630/11/11/115012
  6. 6. van Gils C.A.J., Hofmann S., Boekema B.K.H.L., Brandenburg R., Bruggeman P.J. // J. Phys. D Appl. Phys. 2013. V. 46. P. 175203. https://doi.org/10.1088/0022-3727/46/17/175203
  7. 7. Takamatsu T., Uehara K., Sasaki Y., Hidekazu M., Matsumura Y., Iwasawa A., Ito N., Kohno M., Azuma T., Okino A., Yousfi M. // PLoS One. 2015. V. 10(7). P. e0132381. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0132381
  8. 8. Setsuhara Y. // Arch. Biochem. Biophys. 2016. V. 605. P. 3. https://doi.org/10.1016/j.abb.2016.04.009
  9. 9. Lu X.P., Reuter S., Laroussi M., Liu D.W. Nonequilibrium Atmospheric Pressure Plasma Jets: Fundamentals, Diagnostics, and Medical Applications. Boca Raton: CRC Press, 2019.
  10. 10. von Woedtke T., Emmert S., Metelmann H.-R., Rupf S., Weltmann K.-D. // Phys. Plasmas. 2020. V. 27. P. 070601. https://doi.org/10.1063/5.0008093
  11. 11. Laroussi M., Bekeschus S., Keidar M., Bogaerts A., Fridman A., Lu X., Ostrikov K., Hori M., Stapelmann K., Miller V. et al. // IEEE Trans. Radiat. Plasma Med. Sci. 2022. V. 6. P. 127. https://doi.org/10.1109/TRPMS.2021.3135118
  12. 12. Keidar M., Weltmann K.-D., Macheret S. // J. Appl. Phys. 2021. V. 130. P. 080401. https://doi.org/10.1063/5.0065750
  13. 13. Ermolaeva S.A., Varfolomeev A.F., Chernukha M.Y., Yurov D.S., Vasiliev M.M., Kaminskaya A.A., Moisenovich M.M., Romanova J.M., Murashev A.N., Selezneva I.I. et al. // J. Med. Microbiol. 2011. V. 60. P. 75. https://doi.org/10.1099/jmm.0.020263-0
  14. 14. Heinlin J., Zimmermann J.L., Zeman F., Bunk W., Isbary G., Landthaler M., Maisch T., Monetti R., Morfill G., Shimizu T., Steinbauer J., Stolz W., Karrer S. // Wound Repair Regen. 2013. V. 21. P. 800. https://doi.org/10.1111/WRR.12078
  15. 15. Scholtz V., Pazlarovа´ J., Souskovа´c H., Khuna J., Julа´k J. // Biotechnol Adv. 2015. V. 33. P. 1108. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2015.01.002
  16. 16. Arndt S., Unger P., Berneburg M., Bosserhoff A.K., Karrer S. // J. Dermatol. Sci. 2018. V. 89. P. 181. https://doi.org/10.1016/J.JDERMSCI.2017.11.008
  17. 17. Weishaupt C., Emmert S. // Clin. Plasma Med. 2018. V. 10. P. 16. https://doi.org/10.1016/J.CPME.2018.03.002
  18. 18. Chailakhyan R. K., Grosheva A. G., Gerasimov Y. V., Vorob’eva N. N., Ermolaeva S. A., Sysolyatina E. V., Petryakov A.V., Akishev Y.S. // Bull. Exp. Biol. Med. 2019. V. 167. P. 182. https://doi.org/10.1007/S10517-019-04486-0
  19. 19. Biryukov M., Semenov D., Kryachkova N., Polyakova A., Patrakova E., Troitskaya O., Milakhina E., Poletaeva J., Gugin P., Ryabchikova E. et al. // Biomolecules. 2023. V. 13. P. 1672. https://doi.org/10.3390/biom13111672
  20. 20. Keidar M. // Phys. Plasmas. 2018. V. 25. P. 083504. https://doi.org/10.1063/1.5034355
  21. 21. Bogaerts A., Neyts E., Gijbels R., van der Mullen J. // Spectrochimica Acta Part B. 2002. V. 57. P. 609. https://doi.org/10.1016/S0584-8547 (01)00406-2
  22. 22. Ehlbeck J., Schnabel U., Polak M., Winter J., von Woedtke Th., Brandenburg R., Von Dem Hagen T., Weltmann K.-D. // J. Phys. D: Appl. Phys. 2011. V. 44. P. 13002. https://doi.org/10.1088/0022-3727/44/1/013002
  23. 23. Laroussi M., Lu X., Keidar M. // J. Appl. Phys. 2017. V. 122. P. 020901. https://doi.org/10.1063/1.4993710
  24. 24. Fu W., Zhang Ch., Nie C., Li X, Yan Y. // Appl. Phys. Lett. 2019. V. 114. P. 254106. https://doi.org/10.1063/1.5108538
  25. 25. Lai M., Song S., Oshin E., Potter L., Lai N., Jiang Ch. // J. Appl. Phys. 2022. V. 131. P. 173301. https://doi.org/10.1063/5.0083568
  26. 26. Konchekov E.M., Gudkova V.V., Burmistrov D.E., Konkova A.S., Zimina M.A., Khatueva M.D., Polyakova V.A., Stepanenko A.A., Pavlik T.I., Borzosekov V.D. et al. // Biomolecules. 2024. V. 14. P. 181. https://doi.org/10.3390/ biom14020181
  27. 27. Lu X., Naidis G.V., Laroussi M., Reuter S., Graves D.B., Ostrikov K. // Phys. Rep. 2016. V. 630. P. 1. https://doi.org/10.1016/j.physrep.2016.03.003
  28. 28. Швейгерт И.В., Закревский Д.Э., Милахина Е.В., Гугин П.П„ Бирюков М.М., Патракова Е.А., Троицкая О.С., Коваль О.А. // Физика плазмы. 2023. Т. 49. С. 447. https://doi.org/10.31857/S0367292122601400
  29. 29. Швейгерт И.В., Закревский Д.Э., Милахина Е.В., Александров А.Л., Бирюков М.М., Коваль О.А. // Физика плазмы. 2023. Т. 49. С. 1178. https://doi.org/10.31857/S0367292123601042
  30. 30. Friedenstein A.J., Chailakhjan R.K., Lalykina K.S. // Cell Tissue Kinet. 1970. V. 3. P. 393. https://doi.org/10.1111/J.1365-2184.1970.TB00347.X
  31. 31. Bekeschus S., Kramer A., Schmidt A. // Molecules. 2021. V. 26. P. 5682. https://doi.org/10.3390/molecules26185682
  32. 32. Barjasteh A., Kaushik N., Choi E.H., Kaushik N.K. // Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. P. 16657. https://doi.org/10.3390/ijms242316657
  33. 33. Ермаков А.М., Ермакова О.Н., Скавуляк А.Н., Маевский Е.И. // Биофизика. 2013. Т. 14. С. 802.
  34. 34. Ермаков А.М., Знобищева А.В., Ермакова О.Н., Попов А.Л., Юнусова А.К. // Вестн. Новых Медицинских Технологий. 2016. Т. 23. С. 24.
  35. 35. Akishev Y., Grushin M., Karalnik V., Kochetov I., Napartovich A., Trushkin N. // J. Phys.: Conf. Ser. 2010. V. 257. P. 012014. https://doi.org/10.1088/1742-6596/257/1/012014
  36. 36. Akishev Y., Balakirev A., Grushin M., Karalnik V., Kochetov I., Napartovich A., Petryakov A., Trushkin N. // IEEE Transac. Plasma Sci. 2015. V. 43. P. 745. https://doi.org/10.1109/TPS.2014.2383618
  37. 37. Lietz A.M., Kushner M.J. // J. Applied Phys. 2018. V. 124. P. 153303. https://doi.org/10.1063/1.5049430
  38. 38. Van Gaens W., Iseni S., Schmidt-Bleker A., Weltmann K-D., Reuter S., Bogaerts A. // New J. Phys. 2015. V. 17. P. 033003. https://doi.org/10.1088/1367-2630/17/3/033003
  39. 39. Klutev F.D., Schutz A., Michels A., Vadla C., Veza D., Horvatic V. // Analyst. 2016. V. 141. P. 5842. https://doi.org/10.1039/c6an01352j
  40. 40. Эпштейн Л.А., Вольгрот И.Э. // Труды ЦАГИ. 1967. Вып. 1061. 33 с.
  41. 41. http://www.specair-radiation.net//
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека